- Detalhes
- Categoria: PROGEMULTI
Para solicitar agendamento, os interessados deverão consultar as informações nas imagens abaixo, ou fazer contato pelo e-mail disponível na relação dos laboratórios.
- Detalhes
- Categoria: PROGEMULTI
Unidade: Instituto de Biologia Roberto Alcantara Gomes – IBRAG
Sobre o LMMP: O Laboratório de Marcadores Moleculares em Plantas (LMMP) constitui uma Unidade de Desenvolvimento Tecnológico, voltada à avaliação de marcadores moleculares como subsídio à conservação de germoplasma vegetal de interesse econômico. O LMMP reúne experiência e estrutura para extração e quantificação de DNA de espécies vegetais, sendo este serviço executado por demanda interna ou externa à UERJ, em função das colaborações estabelecidas. Os protocolos de identificação e padronização de marcadores moleculares, visando à avaliação de polimorfismos genéticos em plantas, vêm sendo desenvolvidos e aplicados em vários projetos de monitoramento de materiais obtidos e conservados através de cultura de tecidos ou recuperados após criopreservação, além de projetos de filogenia e avaliação da diversidade genética natural, atendendo, assim, aos alunos de mestrado e doutorado do PGBV/UERJ, além de alunos de graduação preparando seus trabalhos de conclusão de curso). O LMMP também desenvolve ações extensionistas através de projetos, cursos e oficinas e promove o treinamento de alunos de cursos técnicos em biotecnologia, de outras instituições, através de estágios supervisionados.
Principais atividades técnicas: Estabelecimento e padronização de marcadores moleculares em plantas e extração de DNA vegetal adaptando-se diferentes técnicas em função da espécie vegetal estudada, além da purificação e quantificação do DNA vegetal extraído. Os marcadores moleculares estabelecidos possibilitam a detecção de polimorfismos no DNA vegetal e podem ser usados na avaliação da diversidade genética e na elaboração de estratégias de conservação. Além disso, têm sido ferramentas muito importantes para monitorar variações somaclonais na cultura in vitro, que visa, principalmente, às aplicações biotecnológicas.
Coordenação: Rachel Fatima Gagliardi Araujo
Lattes:http://lattes.cnpq.br/4666360046240562
Página do Laboratório: www.labmit.uerj.br (em construção)
Comitê Gestor:
Rachel Fátima Gagliardi Araujo
Lívia da Silva Cordeiro
Jamine de Almeida Pettinelli
Comitê de usuários:
Bianka de Oliveira Soares
Góiade Mattos Lyra
Flávio José da Silva Dantas
Thiago Silva de Paula
Mayara Vidal dos Santos
Corpo técnico:
1. Rachel Fatima Gagliardi Araujo - Professora associada - Coordenação do laboratório - Comitê gestor de equipamentos multiusuários.
2. Lívia da Silva Cordeiro – Bióloga - Comitê gestor de equipamentos multiusuários e agente patrimonial.
3. Jamine de Almeida Pettinelli – Bióloga - bolsista Qualitec Sênior - Comitê gestor de equipamentos multiusuários e gerenciamento do Laboratório.
4. Cíntia de Andrade Silva – Bióloga, bolsista de doutorado CAPES.
5. Rebeca dos Santos Moura – Graduação em biologia - bolsista de EIC/Cetreina.
6. Carlos Henrique da Rosa Mendes - aluno de bacharelado em biologia - desenvolvimento de Trabalho de Conclusão de Curso (monografia).
7. Maria Eduarda Sousa Santos de Oliveira - aluna de bacharelado em biologia - desenvolvimento de trabalho de conclusão de curso (monografia).
Link formas de agendamento: O agendamento para uso do laboratório e equipamentos será realizado via email:
Espaço Físico:
Sala 525D do Pavilhão Haroldo Lisboa da Cunha.
Equipamentos:
Sistema de captura de imagens
Marca: Loccus biotecnologia
Modelo: L-PIX TOUCH
Descrição: Fotodocumentador para captura de imagens de géis de eletroforese.
Visualização de resultados: DNA / RNA / Proteínas / TLC / Placas de Colônia.
Centrífuga
Marca: Novatécnica
Modelo: NT-800
Equipamento que permite a separação de componentes e purificação de DNA/RNA.
Termociclador
Marca: Eppendor
Modelo: Mastercycle nexus gradiente 22331
Equipamento para a realização da amplificação de DNA por meio da reação em cadeia da polimerase (PCR) por meio do controle da temperatura em ciclos de tempo pré-programados.
- Detalhes
- Categoria: PROGEMULTI
Coordenador: Anderson Vilasboa de Vasconcellos
Lattes: http://lattes.cnpq.br/2627503801412287
Coordenadora Adjunta: Maria Leonor Gusmão
Lattes: http://lattes.cnpq.br/2495323064167358
Atividades desenvolvidas:
A Plataforma Genômica Multidisciplinar e Multiusuária (PGMM) do IBRAG/UERJ é uma infraestrutura estratégica multiusuária equipada com dois sequenciadores genéticos de última geração (ABI 3500), um espectrofotômetro nanodrop, dois termocicladores Veriti, um equipamento de PCR em tempo real, um extrator automatizado de DNA e toda a infraestrutura necessária para suporte às atividades científicas de diferentes grupos de pesquisa sediados no Pavilhão Haroldo Lisboa da Cunha da UERJ. Atualmente, a PGMM atende a 23 grupos de pesquisa associados e a centenas de alunos de graduação, mestrado e doutorado, viabilizando infraestrutura em pesquisas em genética humana, biodiversidade e na área forense.
Comitê Gestor:
a) Anderson Vilasboa de Vasconcellos – Coordenador
Lattes: http://lattes.cnpq.br/2627503801412287
b) Maria Leonor Gusmão – Coordenadora Adjunta
Lattes: http://lattes.cnpq.br/2495323064167358
c) Cíntia Barros Santos-Rebouças
Lattes: http://lattes.cnpq.br/5415426502606671
Comitê de Usuários:
a) Cíntia Barros Santos-Rebouças
Lattes: http://lattes.cnpq.br/5415426502606671
b) Dayse Aparecida Silva
Lattes: http://lattes.cnpq.br/8456206846769267
c) Haydee Andrade Cunha
Lattes: http://lattes.cnpq.br/4931150646607381
Forma de Agendamento:
O agendamento para a utilização dos equipamentos multiusuários pode ser feito pelo e-mail
Localização:
Plataforma Genômica Multidisciplinar e Multiusuária do Instituto de Biologia Roberto Alcântara Gomes
Pavilhão Haroldo Lisboa da Cunha – Térreo
Campus Maracanã - UERJ
Equipamentos:
1) Sequenciador automático de DNA I
Modelo: ABI 3500
Marca: Thermo Fisher (Life Technologies)
Finalidade: Equipamento destinado ao sequenciamento de DNA.
2) Sequenciador automático de DNA II
Modelo: ABI 3500
Marca: Thermo Fisher (Life Technologies)
Finalidade: Equipamento destinado à análise de fragmentos de DNA.
3) Centrífuga de placas
Modelo: Sigma
Marca: Uniscience
Finalidade: Centrifugação de ácidos nucleicos e preparação de amostras biológicas utilizando placas de 96 ou 384 amostras.
4) Termociclador para PCR em tempo real (Real-time PCR)
Modelo: ABI 7500
Marca: Thermo Fisher(Life Technologies)
Finalidade: Analisadores moleculares automáticos usados para detectar e analisar, simultaneamente, mais de um sinal de fluorescência, permitindo assim a identificação de diferentes sequências de genes alvos numa única reação
5) Espectrotômetro Nanodrop
Modelo: Nanodrop 2000
Marca: Thermo Fisher (Life Technologies)
Finalidade: Quantificação de ácidos nucléicos.
6) Termociclador I
Modelo: Veriti
Marca: Thermo Fisher (Life Technologies)
Finalidade: Amplificação de DNA através da reação em cadeia da polimerase.
7) Termociclador II
Modelo: Veriti
Marca: Thermo Fisher (Life Technologies)
Finalidade: Amplificação de DNA através da reação em cadeia da polimerase.
8) Extrator automatizado de DNA
Modelo: Maxwell
Marca: Promega
Descrição: Equipamento utilizado na automatização da extração de ácidos nucleicos de amostras biológicas diversas.
- Detalhes
- Categoria: PROGEMULTI
Coordenadora: Norma Albarello
Lattes Coordenadora: http://lattes.cnpq.br/4767211177616413
Coordenadora adjunta: Claudia Simões Gurgel
Lattes Coordenadora adjunta: http://lattes.cnpq.br/5590442186208185
Atividades desenvolvidas:
As linhas de pesquisa desenvolvidas no Labplan visam à obtenção de material vegetal in vitro, com ênfase em espécies de interesse medicinal. A partir da aplicação de técnicas da cultura de tecidos vegetais é possível o fornecimento contínuo de plantas e metabólitos secundários, viabilizando a modulação da produção e redução no tempo de obtenção dos materiais, quando comparados aos métodos convencionais de produção. As metodologias propostas permitem ainda o monitoramento genético e investigação bioquímica e fitoquímica dos materiais estabelecidos in vitro, além da conservação em longo prazo de germoplasma vegetal pelas técnicas de criopreservação. Todas as atividades apresentam grande potencial de geração de processos e produtos biotecnológicos patenteáveis, sendo discriminadas a seguir:
- Produção de plantas in vitro e mudas, permitindo o fornecimento de material botânico de alta qualidade fitossanitária, produzido em espaço físico reduzido, independente de fatores ambientais e sem a necessidade de retirada de material de seu ambiente natural;
- Produção de metabólitos secundários a partir das culturas in vitro, com destaque para as substâncias de interesse medicinal;
- Estabelecimento de protocolos de conservação em longo prazo pelas técnicas de criopreservação, permitindo a preservação de germoplasma de interesse;
- Monitoramento da estabilidade genética de plantas propagadas in vitro empregando marcadores moleculares, garantindo a fidelidade genética dos clones produzidos por métodos biotecnológicos;
- Avaliações bioquímicas e fitoquímicas de extratos obtidos a partir dos materiais estabelecidos in vitro em comparação com os materiais cultivados sob condições naturais, visando à análise da presença de substâncias bioativas.
Comitê Gestor:
a) Norma Albarello: Coordenadora
(http://lattes.cnpq.br/4767211177616413)
c) Claudia Simões Gurgel: Coordenador adjunta
(http://lattes.cnpq.br/5590442186208185)
c) Tatiana Carvalho de Castro
(http://lattes.cnpq.br/9958170698095655)
d) Lívia da Silva Cordeiro
(http://lattes.cnpq.br/0780492341159261)
Comitê de Usuários:
a) Thaís Jorge de Vasconcellos (DBV)
(http://lattes.cnpq.br/5211618627521632)
b) Flavio José da Silva Dantas (DBB)
(http://lattes.cnpq.br/3032582768442174)
c) Renata de Oliveira Garcia (DBCel)
(http://lattes.cnpq.br/6220767903115692)
Corpo Técnico:
a) Claudia Simões Gurgel
(http://lattes.cnpq.br/5590442186208185)
b) Tatiana Carvalho de Castro
(http://lattes.cnpq.br/9958170698095655)
c) Lívia da Silva Cordeiro
(http://lattes.cnpq.br/0780492341159261)
d) Iranilda Calado Santana
(http://lattes.cnpq.br/8874051517475327)
e) Cecília Azevedo de Souza
(http://lattes.cnpq.br/4071677743499994)
f) Luciano Marques Alves
(http://lattes.cnpq.br/4061256006709600)
g) Victor Bastos Pelliccione
(http://lattes.cnpq.br/7920886115037346)
Página do Laboratório:
https://www.labplan.uerj.br/
Forma de Agendamento:
O agendamento para utilização dos equipamentos será realizado via e-mail
Contato:
Endereço: Rua São Francisco Xavier, 524, Pavilhão Haroldo Lisboa da Cunha, 5º andar, salas 509 e 525-e, Maracanã, Rio de Janeiro - RJ - CEP 20550-900. Tel.: (21) 2334-0273.
Espaços Físicos:
Salas 509 e 525-e do Pavilhão Haroldo Lisboa da Cunha (PHLC), Campus Maracanã. (imagens no anexo)
a) Sala 509 / PHLC
b) Sala 525-e / PHLC
Equipamentos:
a) Microscópio invertido - Equipamento que permite a observação de amostras em laboratórios de cultura de tecidos, pesquisa e rotina, pois é um microscópio invertido com óptica de longo alcance e alta qualidade que permite visualizar células vivas e tecidos com clareza. Marca Nikon - Modelo Eclipse TS100.
b) Evaporador rotatório - Esse equipamento é utilizado para a separação de solventes de uma mistura, através da evaporação e condensação de líquidos, promovendo a concentração de uma amostra e/ou a recuperação de solventes. É amplamente usado em laboratórios para remover solventes de amostras, e secar pós, especialmente quando são necessários controle de temperatura e trabalho sob vácuo. Marca Fisatom
c) Centrífuga - Equipamento de laboratório projetado para separação de componentes sólidos de uma amostra líquida ou em suspensão, em função da aplicação de força centrífuga. A separação baseia-se na diferença de densidade dos materiais. Os rotores disponíveis servem para tubos Falcon de 25 e 50 mL. Marca: Novatécnica
d) Moinho - Equipamento utilizado para preparação de amostras através da moagem, trituração e homogeneização de materiais sólidos, em pequena escala, para que fiquem mais uniformes e com partículas de menor tamanho, aumentando a área superficial, o que facilita reações químicas. Ainda melhora a precisão de análises físicas, químicas e biológicas, devido à composição mais uniforme da amostra. Além de permitir o desenvolvimento de novos produtos, com o controle do tamanho e da distribuição das partículas nas formulações. Moinho de facas. Marca: IKA
e) Banho de ultrassom - O banho de ultrassom utiliza ondas sonoras de alta frequência para criar pequenas bolhas de cavitação no líquido. É utilizado para a desgaseificação de líquidos, dissolução de amostras, facilitando o preparo de soluções, e, ainda é empregado para limpar vidrarias, utensílios, peças metálicas, equipamentos médicos e odontológicos, componentes ópticos e instrumentos cirúrgicos. 40 Hz. Marca: UltraCleaner.
f) Balança analítica digital - Destina-se à aferição de valores baixos de massa, com extrema precisão. A capacidade máxima de pesagem é de 220 g. Capaz de medir quatro casas decimais à direita da vírgula (0,0001 g ou 0,1 mg). Marca: Shimadzu
- Detalhes
- Categoria: PROGEMULTI
Coordenação:
Renata de Oliveira Garcia
Georgia Pacheco Peteres de Almeida
O Laboratório de Análises Moleculares em Plantas (LAMP) é uma Unidade de Desenvolvimento Tecnológico (UDT) que integra o Núcleo de Biotecnologia Vegetal (NBV) do Instituto de Biologia Roberto Alcantara Gomes (IBRAG) da Universidade do Estado do Rio de Janeiro.
O LAMP possui uma atuação significativa na área de biotecnologia vegetal, desenvolvendo e aplicando metodologias para análises celulares, bioquímicas, moleculares e metabólicas de plantas. Para essas abordagens são utilizados marcadores moleculares que permitem monitorar alterações genéticas e epigenéticas em materiais de origem biotecnológica, assim como são realizados estudos para a avaliação bioquímica e metabólica, visando ao monitoramento de processos celulares e da capacidade biossintética de plantas produtoras de substâncias de interesse.
Nossas principais atividades incluem:
- Avaliação de marcadores de estresse oxidativo;
- Análises enzimáticas;
- Análise genéticas e epigenéticas de plantas;
- Quantificação de constituintes bioativos de plantas;
- Análises cromatográficas e espectrofotométricas;
- Análises de atividades biológicas.
Comitê Gestor:
a) Renata de Oliveira Garcia (UERJ/DCel) - http://lattes.cnpq.br/6220767903115692
b) Georgia Pacheco Peters de Almeida (UERJ/DCel) - http://lattes.cnpq.br/1212960501180208
c) Iranilda Calado Santana (UERJ/DBV) - http://lattes.cnpq.br/8874051517475327
Comitê de Usuários:
a) Lívia da Silva Cordeiro (UERJ/IBRAG) - http://lattes.cnpq.br/078049234115926
b) Mayara Vidal dos Santos (UERJ/DCel) - http://lattes.cnpq.br/0053768311389963
c) Thaís Jorge de Vasconcellos (UERJ/DBV) - http://lattes.cnpq.br/5211618627521632
Equipe técnica e bolsistas:
a) Iranilda Calado Santana – Farmacêutica
(http://lattes.cnpq.br/8874051517475327)
b) Tielen Viana da Silva– Bolsista Qualitec /InovUERJ
(http://lattes.cnpq.br/6450414933203378)
c) Adrielly de Carvalho Inocencio – Aluna de Iniciação Científica
(http://lattes.cnpq.br/7006464052863380)
d) Marina da Silva Teixeira – Aluna de Iniciação Científica
(http://lattes.cnpq.br/8669341029605351)
e) Henrique de Araujo Dias – Aluno de doutorado
(http://lattes.cnpq.br/4773851334099027)
f) Teresa Cristina Hartje – Técnica
(http://lattes.cnpq.br/7043350962814684)
Para saber mais, acesse: www.lamp.uerj.br
https://www.ibrag.uerj.br/index.php/laboratorios-multiusuarios-progemulti.html
Contato:
Instagram: @lamp_uerj
E-mail:
Endereço: Rua São Francisco Xavier, 524, Pavilhão Haroldo Lisboa da Cunha, 5º e 6ª andar, salas 508 e 602, Maracanã, Rio de Janeiro - RJ - CEP 20550-013.
Telefone: (21) 2334-0595.
Forma de Agendamento:
O agendamento para utilização dos equipamentos será realizado via e-mail:
Espaços Físicos:
a) Sala 508 / PHLC
b) Sala 602 / PHLC
Equipamentos:
1) Cromatógrafo a Líquido, com detector de arranjo de diodos
Modelo: Ultimate 3000
Marca: Dionex
Indicação de uso: Separação, identificação e quantificação de componentes de misturas complexas
Localização: Prédio Haroldo Lisboa da Cunha (Haroldinho) - Sala 508
2) Espectrofotômetro UV-Visível
Modelo: BioMate™ 3S
Marca: ThermoScientific
Indicação de uso: Análise de proteínas e ácidos nucleicos, incluindo a determinação de pureza e concentração, a elaboração de curvas de padronização da concentração de proteínas, além da determinação de densidade celular
Localização: Prédio Haroldo Lisboa da Cunha (Haroldinho) - Sala 602
3) Liofilizador de bancada
Modelo: L101
Marca: Biobras
Indicação de uso: Desidratação por liofilização de amostras aquosas
Localização: Prédio Haroldo Lisboa da Cunha (Haroldinho) - Sala 508
- Detalhes
- Categoria: PROGEMULTI
Coordenadora: Georgia Pacheco
Lattes Coordenadora: http://lattes.cnpq.br/1212960501180208
Coordenadora adjunta: Renata de Oliveira Garcia
Lattes Coordenadora adjunta: http://lattes.cnpq.br/6220767903115692
Atividades desenvolvidas:
O Labmit possui uma atuação significativa na área de Biotecnologia Vegetal, desenvolvendo estratégias para a produção, conservação e uso sustentável de recursos vegetais com potencial ecológico, agronômico, farmacológico, nutracêutico e/ou ornamental, realizando as seguintes atividades:
- Estabelecimento e aplicação de metodologias in vitro para a produção em larga escala de plantas nativas do Brasil de interesse agronômico, ornamental e/ou medicinal, além de espécies ameaçadas de extinção visando à sua conservação em curto e médio prazo e reintrodução na natureza.
- Produção de compostos bioativos derivados de plantas em sistemas biotecnológicos. As abordagens desenvolvidas viabilizam o aumento, a modulação e a redução no tempo de obtenção de constituintes bioativos, quando comparados aos métodos convencionais, permitindo o aproveitamento mais imediato de moléculas de interesse. Essas ações têm resultado em alternativas para a produção de bioinsumos, agregando ainda mais valor a espécies nativas da flora do Brasil para suprir demandas crescentes e ofertas insuficientes nos mercados nacional e internacional.
- Desenvolvimento de estratégias para o armazenamento de plantas em longo prazo, por criopreservação. Estratégia aplicada especialmente para genótipos de elite e/ou de espécies endêmicas sob ameaça de extinção, conciliando o uso sustentável dos recursos genéticos vegetais.
- Caracterização bioquímica de molecular de aspectos ligados à morfogênese, crioproteção e à criotolerância, o que tem sido um diferencial dos estudos sobre propagação e conservação in vitro desenvolvidos pelo Labmit, especialmente para espécies tropicais, ainda pouco conhecidas e estudadas.
- Estudos fitoquímicos visando à caracterização da produção de substâncias bioativas nos materiais de origem biotecnológica, assim como a avaliação de seu potencial biológico, em atendimento à demanda de ampliação do conhecimento sobre o potencial de exploração econômica de espécies vegetais.
- Melhoramento genético de plantas, por transformação genética direta e indireta, visando à modulação da produção de compostos bioativos e à resistência a pragas e patógenos.
Comitê Gestor:
a) Georgia Pacheco: Coordenadora
(http://lattes.cnpq.br/1212960501180208)
b) Renata de Oliveira Garcia: Coordenador adjunta
(http://lattes.cnpq.br/6220767903115692)
c) Graziela da Silva Mello
(http://lattes.cnpq.br/4322925736573406)
Comitê de Usuários:
a) Claudia Simões Gurgel (DBV)
(http://lattes.cnpq.br/5590442186208185)
b) Cátia Henriques Callado (DBV)
(http://lattes.cnpq.br/8632194987247868)
d) Rachel Fátima Gagliardi Araujo (DBCel)
(http://lattes.cnpq.br/4666360046240562)
Corpo Técnico:
a) Renata de Oliveira Garcia
(http://lattes.cnpq.br/6220767903115692)
b) Graziela da Silva Mello
(http://lattes.cnpq.br/4322925736573406)
c) Rachel Fátima Gagliardi Araujo
(http://lattes.cnpq.br/4666360046240562)
d) Teresa Cristina Hartje
(http://lattes.cnpq.br/7043350962814684)
e) Tielen Viana da Silva
(http://lattes.cnpq.br/6450414933203378)
f) Thayssa da Silva Ferreira Fagundes
(http://lattes.cnpq.br/1601579550608801)
Página do Laboratório:
https://www.labmit.uerj.br/
Forma de Agendamento:
O agendamento para utilização dos equipamentos será realizado via e-mail
Contato:
Endereço: Rua São Francisco Xavier, 524, Pavilhão Haroldo Lisboa da Cunha, 5º andar, sala 505, Maracanã, Rio de Janeiro - RJ - CEP 20550-013. Tel.: (21) 2334-0595.
Espaços Físicos:
Sala 505 – Pavilhão Haroldo Lisboa da Cunha:
Casa de vegetação (Telado) – Terraço do Pavilhão Haroldo Lisboa da Cunha
Equipamentos:
Microscópio estereoscópico trinocular, marca Bel photonics. Uso técnico, em pesquisa ou didático, com conexão para câmera fotográfica. Para observação detalhada de objetos, oferecendo uma visão tridimensional de amostras.
Incubadora Shaker Refrigerada, marca Nova Técnica – modelo NT 735. Incubadora Shaker de bancada para laboratório com agitação orbital e aquecimento e refrigeração. Utilizada para incubação de amostras que necessitem de agitação orbital e temperatura controlada.
- Detalhes
- Categoria: PROGEMULTI
Coordenadora: Catia Henriques Callado
Lattes Coordenadora: http://lattes.cnpq.br/8632194987247868
Coordenadora adjunta: Thaís Jorge de Vasconcellos
Lattes Coordenadora adjunta: http://lattes.cnpq.br/5211618627521632
Atividades desenvolvidas:
As linhas de pesquisa conduzidas no Laboratório de Anatomia Vegetal da UERJ têm como foco a obtenção e o estudo de material vegetal, com ênfase em espécies nativas da Mata Atlântica. Por meio da aplicação de técnicas anatômicas, busca-se:
• compreender aspectos relacionados à sistemática, filogenia, ontogênese e fisiologia das espécies;
• relacionar a estrutura anatômica das plantas com as condições ambientais;
• investigar processos de crescimento vegetal;
• apoiar a identificação de espécies em inventários florísticos e fitossociológicos;
• analisar estruturas e processos em plantas produzidas por biotecnologia;
• auxiliar na identificação de espécies vegetais comercializadas;
• contribuir para a identificação taxonômica de madeiras históricas que compõem o patrimônio cultural brasileiro.
Objetivos geral do LAV/UERJ:
Desenvolver, introduzir e aperfeiçoar técnicas e análises anatômicas de plantas da Mata Atlântica e/ou de interesse econômico e/ou medicinal, que contribuam para o inventário, conservação e sustentabilidade da biodiversidade vegetal brasileira e sejam realizadas em associação à formação e especialização de novos recursos humanos na área da botânica e ciências afins.
Comitê Gestor:
a) Catia Henriques Callado (UERJ)
(http://lattes.cnpq.br/8632194987247868)
b) Thaís Jorge de Vasconcellos (UERJ)
(http://lattes.cnpq.br/5211618627521632)
Comitê de Usuários:
a) Catia Henriques Callado (UERJ)
(http://lattes.cnpq.br/8632194987247868)
b) Tatiana Carvalho de Castro (UERJ)
(http://lattes.cnpq.br/9958170698095655)
c) Renata de Oliveira Garcia (UERJ)
(http://lattes.cnpq.br/6220767903115692)
d) Maura da Cunha (UENF)
(http://lattes.cnpq.br/3555799356851041)
e) Helena Regina Pinto Lima (UFRRJ)
(http://lattes.cnpq.br/4257528232125062)
Corpo Técnico:
a) Jeanne Alexandre Teixeira Glória (UERJ)
(http://lattes.cnpq.br/0466176825721047)
b) Nattacha dos Santos Moreira (UERJ)
(http://lattes.cnpq.br/2374791988445100)
Forma de Agendamento: por e-mail mediante preenchimento e aprovação do formulário de marcação: LAV/UERJ Serviços.
Contato:
Endereço: Rua São Francisco Xavier, 524, Pavilhão Haroldo Lisboa da Cunha, 2º e 5 º andar, salas 225 e 523, Maracanã, Rio de Janeiro - RJ - CEP 20550-900. Tel.: (21) 2334-0273.
Espaços Físicos:
Salas 225 e 523 do Pavilhão Haroldo Lisboa da Cunha (PHLC), Campus Maracanã.
EQUIPAMENTOS:
- Detalhes
- Categoria: PROGEMULTI
Objetivos do MultiMassas/UERJ:
a) desenvolver pesquisas, treinamento e prestação de serviços especializados que envolvam o uso das técnicas de espectrometria de massas com foco em metabolômica e proteômica;
b) propor convênios e contratos com entidades públicas e privadas, com vistas ao intercâmbio de conhecimentos e prestação de serviços especializados;
c) dar apoio ao Hospital Universitário Pedro Ernesto e a Policlínica Piquet Carneiro nas atividades ligadas às técnicas desenvolvidas no MultiMassas/UERJ;
d) oferecer estágios aos alunos de graduação e pós-graduação desta Universidade e de outras instituições com foco em linhas de pesquisa que utilizem as técnicas desenvolvidas no MultiMassas/UERJ.
Comitê Gestor:
a) Prof. Alex C. Manhães (UERJ): Coordenador Científico;
(http://lattes.cnpq.br/1445083298662873)
b) Profa. Paula Helena K. Barreira (UERJ);
(http://lattes.cnpq.br/1290495617933793);
c) Profa. Regina Célia Cussa Kubrusly (UFF)
(http://lattes.cnpq.br/1719959034374657);
d) Dr. Ulisses Cesar Araújo (UERJ): Chefe Operacional.
(http://lattes.cnpq.br/4926360383520029).
Comitê de Usuários:
a) Prof. Yael de Abreu Villaça (UERJ);
(http://lattes.cnpq.br/2110538573461886)
b) Profa. Patrícia C. Lisboa (UERJ);
(http://lattes.cnpq.br/6704904748735082)
c) Profa. Nathália Curty de Andrade (UERJ).
(http://lattes.cnpq.br/5522336668110013)
Corpo Técnico:
a) Dr. Ulisses Cesar Araújo (UERJ);
(http://lattes.cnpq.br/4926360383520029)
b) Thamires Christinne de Souza Lopes Cruz Serrão (UERJ).
(http://lattes.cnpq.br/5668921292264983)
Espaços Físicos:
a) Laboratório Principal: localizado no andar térreo do Pavilhão Reitor Haroldo Lisboa da Cunha, campus Maracanã da UERJ;
b) Laboratório Complementar: localizado no andar térreo do Pavilhão Reitor Haroldo Lisboa da Cunha, campus Maracanã da UERJ;
c) Sala de Bioinformática: localizado no andar térreo do Pavilhão Reitor Haroldo Lisboa da Cunha, campus Maracanã da UERJ.
Equipamentos:
a) Espectrômetro de Massas Waters SYNAPT G2-S HDMS 8k;
b) Espectrômetro de Massas Waters XEVO G2-S Tof 4k;
c) Espectrômetro de Massas Waters XEVO TQD;
d) Espectrômetro de Massas Waters ACQUITY QDa Performance.
Links:
a) Plataforma Nacional de Infraestrutura de Pesquisa MCTI (PNIPE):
https://pnipe.mcti.gov.br/laboratory/16543
b) Programa de Gestão de Equipamentos e de Laboratórios Multiusuários da UERJ:
http://progemulti.sr2.uerj.br:8080/emu/#/#top
Publicações recentes do MultiMassas/UERJ:
a) Nucleus Accumbens Proteome Disbalance in an Adolescent Mouse Model of Schizophrenia and Nicotine Misuse Comorbidity. Biomedicines. 2025 Apr 8;13(4):901. doi: 10.3390/biomedicines13040901.
https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/40299488/
b) Changes in the proteome of Apis mellifera acutely exposed to sublethal dosage of glyphosate and imidacloprid. Environ Sci Pollut Res Int. 2024 Jul;31(33):45954-45969. doi: 10.1007/s11356-024-34185-x. Epub 2024 Jul 9.
https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/38980489/
c) Nicotine Exposure in a Phencyclidine-Induced Mice Model of Schizophrenia: Sex-Selective Medial Prefrontal Cortex Protein Markers of the Combined Insults in Adolescent Mice. Int J Mol Sci. 2023 Sep 27;24(19):14634. doi: 10.3390/ijms241914634.
https://pubmed.ncbi.nlm.nih.gov/37834084/
Contato:
E-mail:
Endereço: Rua São Francisco Xavier, 524, Pavilhão Haroldo Lisboa da Cunha, 1º andar, Maracanã, Rio de Janeiro – RJ – CEP 20550-900. Tel.: (21) 2868-8029.
Atenção: Os agendamentos para uso dos equipamentos estão suspensos até a conclusão das manutenções programadas.
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- Categoria: PROGEMULTI
Laboratório: Centro de Pesquisa em Biologia Celular e Ômicas / BIOOmics
Laboratório: Centro de Pesquisa em Biologia Celular e Ômicas / BIO-Omics
Laboratório: Centro de Pesquisa em Biologia Celular e Ômicas / BIO-Omics- Detalhes
- Categoria: PROGEMULTI
Sistema automático para análise tradicional de Injeção em Fluxo - FIA- Detalhes
- Categoria: PROGEMULTI
Criostato 
Ressonância magnetica nuclear 
Untracentrífuga HITACHI himac modelo CP-80WX (Tóquio, Japão)- Detalhes
- Categoria: PROGEMULTI
Eletroporador4D-Nucleofector - Lonza
Fonte financiadora: Convênio CT-INFRA FINEP 01.12.0361.03
A eletroporação é um método físico de transfecção, que permeabiliza a membrana celular através da aplicação de um pulso elétrico que move moléculas da membrana, gerando poros transitórios que permitem a entrada de biomoléculas exógenas (DNA, RNA e proteínas ) nas células. A eficiência de transfecção de grandes fragmentos de DNA por esse método é muito grande, tanto para a maioria das linhagens celulares contínuas, quanto para células primárias.
O eletroporador Nucleofector-4D (Lonza) exibe taxas de eficácia de transfecçãomais elevadas, quando comparado aos eletroporadores tradicionais, devido à optimizações metodológicas que aumentam a transfecção diretamente ao núcleo (“nucleofecção”). O Nucleofector-4D é equipado com a Unidade de Controle (Core Unit) e com o módulo operacional X, no qual células em suspensão podem ser transfectadas, seja em cubetasestéreis de 100μL, ou em “strips” estéreis com 16-wells (20 μL/poço), ideais para a optimização do método. Kits de transfecção, a serem adquiridos à parte pelos usuários, foram otimizados pelo fabricante para a transfecção para da maioria das linhagens comercialmente disponíveis.
Programas de eletroporação específicos para as mesmas linhagens podem ser acionados através do software de controle do Nucleo fector-4D. Tipos celulares não constantes da lista irão requerer a execução de um procedimento de optimização. Recomenda-se usar 1-5 x106 células nas cubetasde 100 μLe 2 x105 células nos 16-well strips. Os usuários interessados devem consultar informações detalhadas no site http://knowledge.lonza.com (LonzaKnowledgeCenter).
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Equipamento: Microscópio Confocal LSM 510 HW Rel. 3.5 and higher / Axio Ob
Equipamento: Microscópio Eletrônico de Transmissão (MET)
Equipamento: Microscópio Eletrônico de Varredura (MEV)